蛋白酶K消化裂解法適用于所有標本的消化處理，尤以DNA樣品為佳.如組 織細胞(包括石蠟包埋組織)絨毛、毛發、精斑、血液(血清、血漿、全血)局部分泌 物、尿，糞便等.
1.試劑配制
�、俚鞍酌窴消化液:10mmol/L Tris.cl(PH8.0)
10mmol/LEDTA
150mmol/LNaCL
0.5%SDS
100～200ug/ml蛋白酶K.
�、诘鞍酌窴最好用水配成20mg/ml，臨用時加入消化液中.
2.提取方法
有些標本、在用蛋白酶K消化前，還需預處理一下，如糞便、分泌物、痰液、組 織塊、石蠟包埋組織等，其方法有離心去掉雜質，脫蠟等.
臨床標本或經預處理的標本加蛋白酶K裂解液50～100ul.混勻，55℃1～3小時， 或37℃過夜.加等體積的飽和酚抽提1～2次，再加等體積的氯仿:異戊醇(49:1)抽提一 次，上清加入1/10體積的pH值5.23mmol/L醋酸鈉緩沖液，加入2.5倍體積的冰冷無水 乙醇(或加等體積的異丙醇)-20℃放置至少3h.取出后14000轉/min離心15min.小心吸 棄或倒出上清，沉淀加入75%冰冷乙醇15000r/min5min離心洗滌1～2次，特別小心的 吸棄或倒掉上清，真空或37℃溫箱或室溫干燥，加TE緩沖液20ul.溶解后，取3～8ul 用于PCR擴增，或放-20℃保存.
蛋白酶K消化法除上述經典處理法外，亦可在蛋白K消化處理標本，經離心處理 后，吸取上清經95～97℃或煮沸10min滅活蛋白酶K后，直接作核酸模板用于PCR擴增. 如雜質較多，還可經酚:氯仿抽提后，即可用于PCR反應.此法蛋白質及其它雜質消除 徹底，Taq酶活性不受影響，具有良好的重復性與穩定性.但操作繁復，技術要求高.
