CCK-8檢測實驗是一種常用的細胞增殖和毒性檢測方法，通過測量細胞內酶活性的變化來評估細胞的活力。本文將為您詳細介紹CCK-8檢測實驗的原理、操作步驟及注意事項，幫助您輕松掌握這一實驗技能！

操作方法：

1. 實驗前將細胞接種96孔板，每組鋪5個平行孔（孔的外圍一圈加PBS，以防邊緣效應影響實驗組），在96孔板中配置100μl的細胞懸液.將培養板在培養箱預培養24小時。

2. 進行CCK-8實驗，棄掉孔內原有培養基并每孔加入新配制的含有終體積1/10 CCK-8溶液（CCK-8試劑盒）的完全培養基，37℃細胞培養箱內孵育1-4h（根據細胞量決定時間長短，細胞越多OD值越大且隨著孵育時間的延長OD值也會變大，最適OD值應保持在2以內）。

3. 在450nm處測定吸光值。

4. 計算細胞增殖率：（實驗組OD - 空白組OD）/（對照組OD - 空白組OD）

注意：

如果待測物質有氧化性或還原性的話,可在加CCK8之前更換新鮮培養基（除去培養基，并用培養基洗滌細胞兩次,然后加入新的培養基），去掉藥物影響。當然藥物影響比較小的情況下,可以不更換培養基,直接扣除培養基中加入藥物后的空白吸收即可。

活力計算:

細胞活力＊(%）=[A_(加藥)—A_（空白）]/［A_{（0加藥）}—A_（空白）] ×100

A_（加藥）：具有細胞、CCK8溶液和藥物溶液的孔的吸光度

A_（空白):具有培養基和CCK8溶液而沒有細胞的孔的吸光度

A_{（0加藥）}:具有細胞、CCK-8溶液而沒有藥物溶液的孔的吸光度

*細胞活力：細胞增殖活力或細胞毒性活力。

CCK-8 可以用于細胞增殖和毒性分析.其基本原理為：該試劑中含有WST-8，它在電子載體（1-Methoxy PMS）的作用下被細胞線粒體中的脫氫酶還原為具有高度水溶性的黃色甲瓚染料，生成的甲瓚物的數量與活細胞的數量成正比,因此可以用這一特性直接進行細胞增殖和毒性分析。

注意事項

細胞接種密度要適中，過低或過高的密度都會影響實驗結果的準確性。

CCK-8試劑的添加量要適量，過多或過少都會影響實驗結果。

培養時間要適當，過長或過短的培養時間都可能導致實驗結果的偏差。

測定吸光度時，要確保酶標儀的校準準確，以獲得可靠的實驗數據。

CCK-8檢測實驗是一種簡便、快速、高靈敏度的細胞活力檢測方法，適用于多種細胞類型和實驗條件。通過掌握實驗原理、操作步驟和注意事項，您可以輕松進行CCK-8檢測實驗，為您的科研工作提供有力支持。